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Co柱常见问题及解决方案

更新时间:2021-12-07 点击次数:1741

在水溶液中,过渡金属离子(如Zn2+、Cu2+、Ni2+和Co2+)与组氨酸和半胱氨酸间具有亲和作用,IMAC正是以此亲和力为基础。将此方法延伸应用,使金属离子“强固定"于载体达到蛋白质分级分离的目的。

应根据具体应用目的选择固定于IMAC配基的金属离子。三价阳离子,如Al3+、Ga3+和Fe3+或四价Zr4+更适合捕获磷酸化蛋白质和磷酸化肽,二价Cu2+、Ni2+、Zn2+和Co2+常用于纯化His标记蛋白质。联合使用四配位配基,可以确保固定化牢固,而且金属离子(Ni2+、Co2+)保留两个自由配位键与生物高分子相互作用时,接受能力更高,同时回收率和洗脱蛋白质纯度无明显变化。

月旭金属螯合亲和介质主推Ni(NTA/IDA)、Co(NTA),今天主要介绍下Co Tanrose 6FF(NTA)的基本参数与常见问题。


  • Co Tanrose 6FF (NTA)

Co Tanrose 6FF(NTA)是以高度交联的6%琼脂糖凝胶为基质,氨三乙酸偶联于琼脂糖而成,之后螯合Co2+。钴NTA琼脂糖凝胶FF特异性好,螯合钴更稳定,不易脱落,能耐受更高的还原剂,物理和化学稳定性好。

  • 产品参数


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柱子反压高


原因分析:

1、填料被堵塞

解决方案:①裂解液中含有微小的固体颗粒,建议上柱前使用滤膜(0.22或0.45μm)过滤,或者离心去除。

②样品中含有高浓度的核酸,加长破碎时间直至粘度降低,或者添加DNase I(终浓度5μg/ml),Mg2+(终浓度1mM),冰上孵育10-15分钟。

2、样品太粘稠

解决方案:有机溶剂或者蛋白稳定试剂(如甘油等)可能会引起反压增高,降低操作流速。

No.2

洗脱组分中没有目的蛋白

原因分析:

1、蛋白可能是包涵体,不在上清中

解决方案:可以通过电泳检测裂解液分析上清中是否含有目的蛋白,包涵体蛋白需要按照包涵体蛋白的纯化方式。

2、表达量太低

解决方案:优化表达条件。

3、目的蛋白结合比较弱,在洗杂步骤被洗下来了

解决方案:提高Wash Buffer的pH,或者降低咪唑浓度。

4、目的蛋白结合过强,不容易洗脱下来

解决方案:降低Elution Buffer的pH值,或者增加Elution Buffer中咪唑浓度。

5、蛋白降解

解决方案:菌体破碎时添加一些蛋白酶抑制剂。在4°C下进行纯化操作。 

No.3

洗脱组分不纯(含有多种蛋白)

原因分析:

1、洗杂不*

解决方案:增加Wash Buffer体积。

2、样品中含有其他的组氨酸标签蛋白

解决方案:通过调节pH值,或者咪唑浓度来优化洗杂条件。再使用其他的纯化手段(如离子交换、疏水等)进一步纯化洗脱组分。

No.4

填料呈现褐色

原因分析:

缓冲液中含有DTT等还原剂

解决方案:适当降低还原剂DTT的浓度,或者改用巯基乙醇。

No.5

上样过程中蛋白发生沉淀

原因分析:

1、操作温度太低

解决方案:室温下进行上样。

2、蛋白发生聚集

解决方案:在样品和所有的缓冲液中添加稳定剂,如0.1%的TritonX-100或者Tween-20。

  • 订购信息


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